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體外染色體畸變試驗原理、試驗設計及常見問題解答

更新時間:2025-07-04      點擊次數(shù):79

第一題    染色體畸變實驗過程中閱片需要配套什么顯微鏡,如何操作?

答:染色體畸變試驗使用的是正置顯微鏡,最好在100×油鏡下進行觀察。先于低倍鏡下尋找背景清晰、分散良好、染色體收縮適中的中期分裂相細胞,再于油鏡下進行染色體畸變觀察并記錄。

第二題    如何確定秋水仙素的濃度和處理時間?

答:若秋水仙素劑量大,則作用時間短;秋水仙素劑量小,則適當延長作用時間。本公司使用的秋水仙素濃度是1μg/mL,4h

第三題    如何根據預實驗中藥物對細胞的毒性選擇后續(xù)給藥劑量,后續(xù)給藥設置幾個濃度梯度?

答:具體難度設置需要參考所屬受試物類型的相關標準。當細胞有毒性反應時,最高濃度所產生的細胞毒性應達到約50%,最-低濃度應無細胞毒性。后續(xù)試驗應設至少3個劑量組,組距在2~√10。

第四題    低滲目的是什么?有什么注意事項?

答:在低滲環(huán)境中,細胞易吸水膨脹,染色體鋪展,以便能在一個平面上觀察所有染色體形態(tài),為后續(xù)染色做準備。在低滲過程中我們需要注意以下幾點:

(1)低滲時間。低滲時間過長,可引起細胞破裂,染色體丟失;低滲時間不足,細胞膨脹度不夠,染色體聚集,分散不好,不利于閱片。本公司低滲是使用0.075mol/L的氯-化鉀溶液37℃水浴30~40min。

(2) 細胞操作需輕柔。低滲后的細胞會脹大,通透性增強,細胞操作過程一定要輕柔,以防細胞破裂。

(3)離心條件需適合。低滲后細胞膨脹,離心力過高,細胞容易破裂,導致染色體丟失;離心力過低,細胞不能沉淀,收集不到細胞。

第五題    一張撥片可觀察到200個中期分裂項嗎?如果不夠,該怎么處理?

答:大多數(shù)情況下,一張玻片很難找到200個可用于分析的中期分裂相,建議同一個劑量組多制作一些玻片,本公司一個劑量組通常會制作至少4張玻片,以保證足夠中期分裂相細胞可供分析。

第六題    低滲的溫度控制在什么范圍內?

答:低滲時可保持溫度在37℃左右,此溫度下對細胞的影響較小。

第七題    在預實驗中需要使用 s9做有活化系統(tǒng)的預實驗嗎?

答:建議在預實驗中加入S9活化系統(tǒng)進行同步檢測,判斷有或無代謝活化系統(tǒng)條件下受試物對細胞的毒性作用。

第八題    封片怎么操作?

答:長期保存玻片可使用中性樹脂膠對染色干燥后的玻片進行封裝,操作時可在玻片邊緣滴加1-2滴中性樹脂膠,再將蓋玻片沿滴加位置順壓至整個玻片,過程中保持輕柔,避免殘留氣泡或過多溢膠,以免影響后續(xù)觀察。

第九題    CHL細胞鑒定包括哪些方面?合格判定的標準是什么?

答:

(1)功能特性驗證?:細胞貼壁成纖維樣,倍增時間<24小時;

(2)純凈度檢測?:支原體檢測,結果需陰性;

(3)染色體核型鑒定?:檢測染色體數(shù)目與結構。CHL細胞需保持核型穩(wěn)定,正常染色體數(shù)為25±2條,13條等臂染色體、12條端著絲粒染色體,自發(fā)畸變率<5%。

第十題    細胞毒性預實驗有哪些注意事項,MTT結果可以代替嗎?

答:細胞毒性預實驗需注意同步帶上溶劑對照,并建議在染毒結束后進行鏡下記錄觀察,再采用一定方法進行量化。MTT法和CCK-8法都是比較常用的細胞毒性檢測試劑,都可用與該實驗的細胞毒性判斷。

十一題    加活化系統(tǒng)和不加活化系統(tǒng)在畸變結果上有差別嗎?差別大嗎?

答:添加代謝活化系統(tǒng)(?+S9?)與不添加(?-S9?)可能導致畸變結果的顯著差異,具體取決于受試物的代謝特性。+S9系統(tǒng)是模擬哺乳動物肝臟代謝環(huán)境,可將前體化合物轉化為活性致畸代謝物。?-S9系統(tǒng)則是直接檢測受試物本身或其穩(wěn)定代謝物的遺傳毒性。

十二題    為什么選擇CHL作為常用細胞而不選擇CHO,有哪些區(qū)別?

答:CHL和CHO細胞都是大部分指導原則內推薦使用的細胞系,而相較CHO細胞,CHL細胞的染色體數(shù)目相對穩(wěn)定,且目前大多機構使用CHL細胞較多。

十三題    閱片時看不見著絲點染色體,都成單條染色體成對出現(xiàn),這是為什么哪個步驟出現(xiàn)了問題?

答:出現(xiàn)此結果的主要原因是未將細胞終止在有絲分裂中期,而是到了有絲分裂后期??赡苁乔锼伤氐淖饔脮r機稍晚或作用濃度過低所致,有絲分裂后期表現(xiàn)為著絲粒分裂,姐妹染色單體分離成獨立染色體,呈現(xiàn)“單條成對"向兩極移動。

十四題    CHL細胞作為實驗系統(tǒng)細胞準備時推薦的接種密度多大,接種后培養(yǎng)多久時間可以開始進行染毒?

答:本公司使用T25瓶進行試驗,接種密度為6~9×10^4/mL,接種量為5mL,即每瓶細胞量是3×10^5個~4.5×10^5個。一般情況下,接種后24h左右細胞的融合率可達到80%即可進行染毒,如果融合率不夠,也可以繼續(xù)培養(yǎng)直至滿足試驗需求。

十五題    制片過程中離心后有黑色渣渣出現(xiàn),最后滴出來的片沒有染色體,但是有很多細胞圈,是什么原因?

答:有黑色渣渣出現(xiàn)可能原因包括

(1)細胞碎片過度堆積?:組織消化不徹-底或低滲處理時間過長(>30分鐘),導致細胞膜破裂釋放大量碎片,離心后形成黑色絮狀物。

(2)?固定劑殘留或變質?:甲醇-冰醋酸固定液比例錯誤(標準3:1)或陳舊固定液產生沉淀物,與細胞碎片結合呈黑色顆粒。

滴出來的片沒有染色體,但是有很多細胞圈的主要原因是細胞未被終止在有絲分裂中期,可能已完成細胞有絲分裂。

十六題    玻片想要長期保存,需要如何處理?

答:要長期保存玻片,需正確使用中性樹脂膠對玻片進行封裝,后續(xù)密封放置于陰涼處,可保存數(shù)年。

十七題    受試物容易析出結晶,難以溶解,最大溶解度的細胞毒性達不到50%。這種情況如何設置濃度?

答:在染色體畸變試驗中,受試物溶解性差且最大溶解度下細胞毒性不足50%時,需結合對應指導原則采取措施。當觀察到肉眼可見的沉淀時,可放棄50%細胞毒性的硬性要求。同時試驗允許使用1個含可見沉淀的濃度?,但需確保沉淀不覆蓋細胞層或干擾顯微鏡觀察;沉淀在培養(yǎng)液中分布均勻,避免局部高濃度損傷。?

十八題    請描述一下畸變類型粉碎性的染色體。

答:“粉碎性的染色體"可能由于低滲時間過久、滴片位置較高、重懸操作用力過度所致,細胞膜破裂,導致內部染色體被釋放至外部分散存在。


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